【摘要】 目的: 探讨外源性结缔组织生长因子(ctgf)在人肾小管上皮细胞转分化及细胞外基质合成中的作用. 方法: 将体外培养的人肾小管上皮细胞hk2分为三组:对照组;ctgf小剂量组(终浓度为2.5 μg/l);ctgf大剂量组(终浓度为20 μg/l). 用倒置显微镜观察细胞形态学变化;噻唑蓝(mtt)法检测细胞增殖活性;rtpcr检测hk2细胞e钙黏蛋白(ecadherin),α平滑肌肌动蛋白(αsma),纤连蛋白(fn)和胶原ⅰαmrna水平的变化;免疫组织化学方法观察hk2细胞fn和胶原ⅰ的表达. 结果: ctgf刺激使hk2 细胞由椭圆形变为梭形,同时促进hk2细胞增殖. 不同浓度的ctgf作用于hk2细胞48 h后,αsma 和fn mrna水平显著升高(p<0.05),e钙黏蛋白mrna的表达显著下降(p<0.05);大剂量ctgf刺激hk2细胞48 h后胶原ⅰαmrna水平显著升高(p<0.05). 小剂量ctgf组hk2 细胞胞质fn表达水平显著增加(p<0.05),大剂量ctgf组hk2细胞胞质表达fn和胶原ⅰ均显著增加(p<0.05). 结论: ctgf在体外能够诱导人肾小管上皮细胞转分化,并促进fn的合成,大剂量的ctgf可以增加其胶原ⅰ的合成.
【关键词】 结缔组织生长因子;肾小管;上皮细胞;转分化;细胞外基质
大量证据表明,肾小管上皮细胞转分化为间充质细胞(epithelialmyofibroblast transdifferentiation, emt)是肾间质纤维化发生机制之一[1]. 结缔组织生长因子(connective tissue growth factor, ctgf)是近年来发现与肾纤维化密切相关的细胞因子. 在新月体肾小球肾炎,iga肾病,局灶性节段性肾小球硬化以及糖尿病肾病的肾活检标本中发现ctgf表达增高,多种肾纤维化动物模型也证实存在ctgf表达上调[2]. 目前较多研究证实,ctgf作为转化生长因子β(tgfβ)的主要下游因子,参与了emt的发生与发展,但有关ctgf对肾小管上皮细胞直接作用的机制仍不十分明确. 本研究我们探讨外源性ctgf能否诱导人肾小管上皮细胞发生转分化及对细胞外基质合成的作用.
1材料和方法
1.1材料
细胞: 正常人肾小管上皮细胞(hk2)购自中国武汉典型培养物保藏中心. 主要试剂:重组人ctgf蛋白(rhctgf, peprotech),dmem/f12培养基,hepes(gibcol),胎牛血清(杭州四季青公司);rna抽提试剂trizol(invitrogen),逆转录试剂盒(promega),taq酶,dna maker(takara ),羊抗人胶原ⅰαpab(1∶200,santa cruz),小鼠抗人fn mab(1∶200,neomarkers),hrp标记兔抗羊二抗,hrp标记兔抗小鼠二抗,(1∶200),dab显色液(武汉博士德公司);mtt(美国sigma公司);图像分析处理系统(美国uvp公司);聚合酶链反应引物:均由invitrogen公司合成 (表1). 表1引物序列(略)
1.2方法
1.2.1细胞培养及分组将hk2细胞用含100 ml/l fbs的dmem/f12培养液传代培养,培养条件为37℃,50 ml/l co2 . 0.5 g/l胰酶+0.2 g/l edta消化细胞后,1×108/l细胞接种于50 ml塑料培养瓶. 先以100 ml/l fbsdmem/f12培养细胞,70%~80%融合时改用无血清培养基培养24 h,使细胞生长同步化. 弃去培养液,将hk2细胞分为三组. 对照组:加无血清dmem/f12培养液;小剂量ctgf组:在无血清dmem/f12培养液中加入ctgf(终浓度为2.5 μg/l);大剂量ctgf组:在无血清dmem/f12培养液中加入ctgf(终浓度为20 μg/l). 每组设3个复瓶,作用48 h后收集细胞.
1.2.2hk2细胞形态学观察加入各组试剂后,每6 h在倒置显微镜下观察细胞形态变化,48 h后倒置显微镜下照相.
1.2.3mtt法将hk2细胞制成悬液,按1×108/l接种于96孔板中,细胞分组同前,每组设6个复孔,刺激48 h后mtt比色法测定细胞增殖,以每孔a490 nm处吸光度(a)值表示.
1.2.4rtpcr加入ctgf 48 h后,按照trizol说明书在培养瓶中提取总的rna,经紫外分光光度计鉴定,取总rna2 μg作逆转录,试验步骤参照逆转录试剂盒说明书进行. 取1 μl逆转录产物为模板,进行pcr扩增反应. gapdh 反应参数如下:预变性94℃ 5 min,变性94℃ 30 s,退火54℃. e钙黏蛋白(ecadherin)和纤连蛋白(fibronectin,fn)退火59℃,αsma和胶原ⅰα退火63℃, 40 s,延伸72℃ 30 s,28个循环(ecadherin,fn,αsma和胶原ⅰα 32个循环)后,72℃延伸7 min. 取pcr产物5 μl在10 g/l琼脂糖凝胶上电泳,凝胶成像系统成像后,用图像分析处理系统进行灰度扫描,以密度代表其表达量. 用gapdh量校正,计算出ecadherin,αsma,fn和胶原ⅰα的相对表达量[3]. 重复3次独立的rtpcr全过程.
1.2.5免疫组织化学细胞爬片制作: 将hk2细胞制成悬液,按1×108/l接种于置有波片的6孔板中,培养条件、细胞分组和处理方法同前,48 h后收集波片. 免疫组化染色:波片冰丙酮固定, triton x100孵育,0.3 ml/l双氧水孵育,兔血清37℃封闭,加一抗,二抗,sabc液孵育,最后dab显色,苏木素复染,pbs代替一抗做阴性对照. 结果判定: 以细胞胞浆出现棕黄色颗粒为阳性细胞,采用捷达病理图像分析软件分析,各组细胞爬片随机取6个视野,分别测定其平均吸光度(a)值.
统计学处理: 所有数据由spss 11.0统计软件进行分析,计量数据以x±s表示,组间均数比较采用单因素方差分析,dunnet检验和非参数秩和检验. p<0.05为差异有统计学意义.
2结果
2.1ctgf对hk2细胞形态的影响
倒置显微镜下观察结果显示,正常hk2 细胞为椭圆形贴壁细胞,培养液中加入ctgf(2.5 μg/l)48 h后,可见hk2细胞由椭圆形变为长梭形. 增加培养液中ctgf浓度(20 μg/l),细胞形态的梭形化更加明显.
2.2ctgf对hk2细胞增殖的影响
结果显示,每孔a490 nm处吸光度(a)值对照组为0.236±0.026;小剂量ctgf组为0.289±0.033;大剂量ctgf组为0.314±0.046. 与对照组比较结果显示,不同剂量ctgf均可促进细胞增殖(p<0.05).
2.3ctgf对hk2细胞ecadherin和αsma mrna水平的影响
rtpcr结果显示,正常hk2细胞表达ecadherin,不表达αsma. ctgf(2.5, 20 μg/l)刺激48 h后,ecadherin mrna的表达较对照组下降(p<0.05),αsma mrna的表达较对照组提高(p<0.05,图1).
2.4ctgf对hk2细胞fn和胶原ⅰαmrna水平的影响
rtpcr结果显示,正常hk2细胞少量表达fn和胶原ⅰα. ctgf(2.5, 20 μg/l)刺激48 h后,fn mrna的表达较对照组增加(p<0.05). 小剂量ctgf组作用48 h后,胶原ⅰα mrna的表达较对照组无统计学意义(p>0.05);大剂量ctgf组刺激48 h后,胶原ⅰα mrna的表达较对照组显著增加(p<0.05,图2).
2.5ctgf对hk2细胞胞质fn和胶原ⅰ表达的影响
免疫组化结果显示,与对照组比较,小剂量的ctgf可以提高hk2细胞胞质fn的表达;增加ctgf的浓度,hk2细胞胞质fn的表达量增加更多(p<0.05). 小剂量ctgf组作用48 h后,hk2细胞胞质胶原ⅰ的蛋白表达较对照组相比无统计学意义(p>0.05);大剂量ctgf组刺激48 h后,hk2细胞胞质胶原 ⅰ 的蛋白表达较对照组增加(p<0.05,表2). 表2ctgf对hk2细胞胞质fn和胶原ⅰ的表达(略)
3讨论
自strutz等[4]于1995年首先证实肾小管上皮细胞可以转化为间质细胞,以后称为emt,emt在肾间质纤维化中的作用日益受到人们的关注. 目前研究显示,有超过三分之一的肌成纤维细胞起源于肾小管上皮细胞[1]. emt主要包括四个关键步骤:上皮黏附特性消失,αsma表达和肌动蛋白重组,突破基底膜,细胞迁徙和侵袭增强[5].
ecadherin是细胞间黏附蛋白,维持上皮细胞结构完整性和上皮极性,丧失ecadherin会引起上皮细胞间紧密连接消失,细胞失去极性. α sma 是平滑肌的标志蛋白,同时也是肌成纤维细胞的标志性蛋白,现被普遍用于检测肾小管上皮细胞向肌成纤维细胞的表型转化. 正常hk2 细胞表达ecadherin,不表达αsma. 肌成纤维细胞同时具有成纤维细胞和肌细胞的特性,表达αsma[6]. 我们的研究发现,ctgf能够使培养的正常hk2细胞发生形态学改变,细胞由椭圆变为长梭形,类似成纤维细胞形态. 提示细胞骨架构成发生改变. 研究也发现ctgf可以显著提高hk2细胞的增殖活性. rtpcr结果提示,对照组hk2细胞表达ecadherin,几乎不表达αsma. ctgf作用于正常hk2细胞,能够显著降低ecadherin mrna的表达,提高αsma mrna的表达. 这表明hk2细胞在ctgf作用下可能由上皮细胞表型向肌成纤维细胞表型发生转变.
细胞外基质在肾间质的过度沉积是引起肾间质纤维化的主要原因[7]. fn和ⅰ型胶原在间质的表达增多是肾间质纤维化的主要病理变化. ⅰ型胶原不仅作为ecm的重要组成部分,同时能够通过稳定间充质细胞的表型,进一步促进肾间质纤维化的发展. 本研究中我们发现,不同浓度的ctgf可以显著增加hk2细胞fn 基因的转录. 小剂量ctgf不能增加hk2细胞ⅰ型胶原基因的转录. 大剂量ctgf刺激hk2细胞,ⅰ型胶原基因的转录较对照组显著提高. 免疫组化结果也进一步证实ctgf可以提高hk2 细胞胞质fn蛋白的表达,大剂量ctgf能够增加hk2细胞胞质ⅰ型胶原蛋白的表达. qi等[8]在人近端小管上皮细胞,使用ctgf 20 μg/l刺激48 h,能够增加fn蛋白的表达,轻度增加ⅳ型胶原的表达. 张春等[9]的研究显示ctgf可以促进人近曲小管上皮细胞分泌fn. wang等[10]使用ctgf 1 μg/l刺激小鼠近端小管上皮细胞48 h,ⅰ型胶原的基因转录较对照组无显著变化. 这些研究与本实验结果相似. 我们研究发现ctgf 20 μg/l刺激hk2细胞48 h,可以增加ⅰ型胶原的表达,其与小剂量ctgf作用结果不同,考虑是由于ctgf剂量差异所致.
综上,ctgf可能通过诱导肾小管上皮细胞转分化,增加fn的合成,大剂量的ctgf可以增加其胶原ⅰ的合成,参与肾间质纤维化的发生发展. 因此阻断ctgf表达或者抑止其活性可能是更为有效的防治纤维化的手段.
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