第一篇：基于网络药理学探析复方阿胶浆辅助治疗肿瘤的作用机制研究
复方阿胶浆是以著名医学家张介宾《景岳全书》中记载“两仪膏”为基础方发展起来的，由阿胶、人参、党参、熟地黄及山楂等药物组成，具有补气、养血的功能。近年来，在临床上常用于癌症患者的治疗，能改善恶性肿瘤患者癌因性疲乏状态和体制，以及提高患者免疫功能和生活质量[1-2]。药理试验结果表明，该产品能明显延长荷瘤小鼠的生存时间，有效缓解放化疗所带来的免疫力低下、体重下降和降低继发的感染性死亡机率[3-5]。但是，对其分子机制研究的比较少，还没有采用网络药理学技术对其分子机制进行研究，复方阿胶浆对肿瘤治疗的分子机制不清楚。
中药复方具有“多成分、多靶标”协同作用的特点，中药网络药理学是在高通量组学数据分析、计算机虚拟计算及网络数据库检索基础上，从分子生物网络角度，系统地揭示中药方剂药理作用及其作用机制[6-7]，已被广泛应用于中药药效基础、方剂作用原理、中药药性与疗效的相关性及中药产品的安全性评价等相关领域的研究中[8-10]。在本文中，对复方阿胶浆对肿瘤治疗进行了网络药理学研究，从而揭示其分子作用机制和为临床应用提供依据。
1 材料与方法
1.1 肿瘤分子靶标网络的构建 在Drugbank数据库（）中，输入关键词"cancer"，找到治疗癌症的药物，确定治疗癌症靶标，然后通过蛋白质-蛋白质相互作用数据库（PPI），如HAPPI,OPHID,IntAct,MINT和DIP等获得癌症靶标-相互作用靶标对，从而获得癌症的分子生物网络。
1.2 复方阿胶浆化学成分库的构建 依托PubMed （）、中文期刊数据库SinoMed （）、化学数据库（. ）、中草药数据库（）等数据库收集复方阿胶浆中阿胶、党参、山楂和熟地黄的化学成分，构建复方阿胶浆的化学成分库。
1.3 复方阿胶浆靶标预测 采用MetaDrug软件（GeneGo, Inc.）预测复方阿胶浆中化学成分的靶标[11]。MetaDrug数据库包括700 000手动注解化合物，它们和4 500靶标蛋白相联系形成化合物-靶标对。工作流程如下：首先，输入化学成分的二级结构，通过相似性搜索，按照Tanimoto系数≥0.7，找到相似性药物，进而找到相对应的靶标。
1.4 网络构建与分析 采用Cytoscape2.8.1 软件（）进行网络构建、分析和可视化工作。节点代表化合物和靶标，边分别代表化合物-靶标对和靶标-相互作用靶标对。网络分析通过评价网络的拓扑结构特性：度（degree）指和节点连接的数目；关联度（betweenness）指通过节点的边的数目。度和关联度能确定在网络中节点的拓扑结构重要性，数值越大说明越重要。构建肿瘤分子靶标网络、复方阿胶浆的成分-靶标网络以及复方阿胶浆成分-癌症相关靶标网络3个网络。
1.5 功能分析和代谢通路分析 ClueGO软件（澳大利亚格拉茨大学）用于复方阿胶浆作用的癌症靶标及其与癌症相互作用靶标的基因功能分析和代谢通路分析。
2 结果与讨论
2.1 肿瘤分子靶标网络的构建 肿瘤的分子靶标网络由癌症靶标-相互作用靶标对构成，见图1.从图1中可以看出，该网络总共包括778个节点，其中蓝色节点表示癌症药物靶标，有36个，黄色节点表示与癌症药物靶标相互作用的靶标蛋白，有742个，有900个癌症靶标-相互作用靶标对。网络分析结果表示，主要的网络拓扑参数如下：聚类系数（Clustering coefficient）为0.017，网络直径（network diameter）为3，平均相邻数目（Avg. number of neighbors）为2.308，网络拓扑结果表明，节点之间连接度比较低，整个网络信息的交流小，不具有小世界网络特性，说明单独调节一个靶标难以有效调节癌症整个网络，需要发展对多个靶标同时治疗的策略。
2.2 复方阿胶浆的成分-靶标网络 通过Metdrug软件获得复方阿胶浆的成分-靶标网络，见图2.从图2中可以看出，该网络总共包括956个节点，其中化学成分361个，复方阿胶浆作用的靶标蛋白585个，有33 110个成分-靶标对。从图2中可以看出，复方阿胶浆能直接作用17个癌症靶标，分别为DCK,DNMT1，PYGM,FASN,HTR2A,POLA1，AHR,CDK6，EGFR,ESR2，EGFR等，同时，也能作用到24 个与癌症相关靶标，分别为LUC7L2，ATP5B,SMAD3，APP,SMAD2，JAK2，TLR4，SMAD1，DOK1等，说明复方阿胶浆对肿瘤治疗既有直接作用，也有间接作用。
进一步提取“复方阿胶浆的成分-癌症相关靶标对”，获得复方阿胶浆的成分-癌症相关靶标网络，见图3.从图3中可以看出，具有抗肿瘤作用的成分27个，其中4个氨基酸（苯丙氨酸、赖氨酸、精氨酸、谷氨酸）是复方阿胶浆中君药阿胶的胶原蛋白经过胃、肠道消化得到，它们能直接作用到3个癌症靶标（TRb/RXRb,LDLR,HTR2A），它们与癌症的分化、增值有关[13-14]；同时，又能作用于11个癌症相关靶标 （JAK2，TBK1，STAT2，STAT1，SMAD1，HSPA1B,GRB2，ALPP,DDAH2等）。其中，JAK2与治疗严重性血液异常疾病有关[15]， SMAD1受体的磷酸化能参与T-细胞的骨骼形成蛋白信号通路[16]从而提高人体免疫力，由此可见，复方阿胶浆中能够通过补血和提高免疫力参与肿瘤化疗的辅助治疗。其他23个成分分别来源于人参、熟地黄、党参、山楂，同样它们也在肿瘤治疗过程中发挥了重要的作用。
2.3 基因功能和代谢通路分析 生物信息富集包括基因功能和代谢通路分析十分重要，本项目采用ClueGO进行分析，见图4，5.从图4可以看出，复方阿胶浆作用的癌症靶标及其与癌症靶标相互作用靶标的基因功能主要富集在视黄醇类受体（retinoid-X receptor）、脱氧核酸激酶活性（deoxynucleside kinase activity）、水裂解酶活性（hydro-lyase activity）、碳氧裂解酶活性（carbon-oxygen lyase activity）、脂多糖结合活性（lipopolysaccharide binding）等。以上多个基因功能与癌症细胞分化、生长、增殖和凋亡等方面有着多种调节作用，例如视黄醇类受体[12]、脱氧核酸激酶活性[13]。代谢通路分析见图5，复方阿胶浆作用的癌症靶标及其与癌症靶标相互作用靶标的代谢通路富集主要在多个非小细胞癌症，例如肺癌、胰腺癌、结肠癌等。
3 结论
复方阿胶浆在临床上常用于肿瘤辅助治疗，本文中采用网络药理学研究技术，从“多成分，多靶标”角度揭示了复方阿胶浆对肿瘤治疗潜在的分子机制，结果表明，复方阿胶浆既能直接调节癌症细胞分化、生长、增殖和凋亡，具有一定的抗肿瘤作用，同时，也能通过补血、提高免疫力间接的提高抗肿瘤的效果。
[参考文献]
[1] 张洪珍，尤金花，段昕波，等。复方阿胶浆治疗癌性恶病质的疗效观察[J].临床合理用药，2011，4（11B）：10.
[2] 李娜，陈信义，李潇，等。复方阿胶浆治疗癌因性疲乏的临床观察[J].中华中医药杂志，2013，28 （2）：565.
[3] 栗敏，马洪宇，沈继朵，等。 复方阿胶浆对H22肝癌荷瘤小鼠5-FU化疗的增效减毒作用[J].中国实验方剂学杂志，2012，18（20）：216.
[4] 张再庆。复方阿胶浆对肿瘤患者红细胞和白细胞的影响[J]. 临床经验谈，2005，21（271）：24.
[5] 张再庆。复方阿胶浆对肿瘤患者红细胞和白细胞的影响[J]. 中国社区医师， 2005（1）：24.
[6] Fan X, Shao L, Fang L, et al. Cross-platform comparison of microarray-based multiple-class prediction[J]. PLoS ONE,2011， 6 （1）： e16067.
[7] Li S, Zhang B, Jiang D, et al. Herb network construction and co-module analysis for uncovering the combination rule of traditional Chinese herbal formulae[J]. BMC Bioinformatics,2011，11 （S11）： S6.
[8] 许海玉，黄璐琦，卢鹏，等。基于体内ADME过程和网络药理学的中药现代研究思路[J].中国中药杂志， 2012，37（2）：142.
[9] Zhao J, Jiang P, Zhang W D. Molecular networks for the study of TCM pharmacology[J]. Brief Bioinform, 2010，11：417.
[10] Xu H Y, Tao Y, Lu P, et al. A computational drug-target network for Yuanhu Zhitong prescription[J]. Evid Based Complement Alternat Med,2013，doi:658531.
[11] Nikolsky Y, Kleemann R. Systems biology approaches to the study of cardiovascular drugs[J]. Methods Mol Biol, 2010， 662：221.
[12] 邱琳，孙强。视黄醇受体与肺癌变[J]. 医学综述，2009，15（13）：1957.
[13] Xu X C, Sozzi G, Lee J S, et al. Suppression of retinoic acid receptor beta in non-small-cell lung cancer in vivo: implications for lung cancer development[J]. J Natl Cancer Inst,1997，89 （9）：624.
[14] Chen Y, Hughes-Fulford M. Human prostate cancer cells lack feedback regulation of low-density lipoprotein receptor and its regulator, SREBP2[J]. Int J Cancer,2001，91（1）：41.
[15] Babon J J, Kershaw N J, Murphy J M, et al. Suppression of cytokine signaling by SOCS3： characterization of the mode of inhibition and the basis of its specificity[J]. Immunity,2012，36（2）：239.
[16] Yoshioka Y, Ono M, Osaki M, et al. Differential effects of inhibition of bone morphogenic protein （BMP） signalling on T-cell activation and differentiation[J]. Eur J Immunol,2012，42（3）：749.
[通信作者] *尤金花，研究员，E-mail: youjh@；*黄璐琦，研究员，博士生导师，E-mail: huangluqi01@
[作者简介] 许海玉，博士，副研究员，E-mail:hy_xu627@
第二篇：血清药理学方法在诱导肿瘤细胞凋亡降低酶活性研究中的应用
20世纪80年代中期，日本学者Iwama H等率先提出“血清药理学方法”。此法是先给动物灌胃给中药，一定时间后再采集、分离其血清，并用此含药血清进行体外实验[1]。血清药理学方法已被广泛用于中医药作用机制的研究，研究层面已涉及到细胞增殖、分化、凋亡与细胞周期的调节以及基因表达等方面。本研究采用治疗胃癌、肝癌、肺癌、大肠癌等中药血清学方法，深入探讨其诱导肿瘤细胞凋亡、降低肿瘤细胞三磷酸腺苷酶（Mg2+—ATPase)与葡萄糖-6-磷酸酶(G-6-Pase)酶活性作用。
1 实验方法
1.1细胞培养主要试剂 抗肝癌、胃癌、肺癌、大肠癌等不同中药复方中的中药，均由辽宁中医药大学第一附属医院提供。
1.2中药制剂制备 将3个不同中药复方组成后传统煎制：中药清水浸泡2h,煮沸后文火煎15min,纱布过滤取汁，药渣加水再煎20min,两次药汁混合，浓缩为100%。
1.3药物血清制备 动物：SD大鼠由辽宁中医药大学实验动物中心提供。30只SD大鼠随即分为3组，即中药组10只，化疗组10只，对照组10只。实验前禁食12h,采用2次给药方法（第1次给药2h后重复等量给药1次），每100g大鼠灌胃中药制剂1mL,2次/日连续灌胃3天。化疗组、对照组生理盐水等量灌胃3天。分别在末次给药后1、2、3h采血，戊巴比妥钠麻醉，无菌条件下，下腔静脉取血，静置4h,4℃，3000r/min 20min离心，分离血清，同种条件药物血清混匀，过滤，56℃30min灭活，-20℃保存，备用。
血清分组：中药血清组（中药组）、化疗血清组（西药顺铂-DDP组）、对照血清组（对照组）。（1）中药血清组：临用前将中药组大鼠血清加入PRMI1640培养液，浓度分别为5%、10%、20%。（2）化疗血清组：用含10%化疗组大鼠血清PRMI1640培养液，DDP的终浓度为5%、10%、20%。（3）对照血清组：大鼠血清中加入PRMI1640培养液，终浓度为5%、10%、20%。
1.4细胞株 肝癌细胞株、SGC7901胃癌细胞株、细胞株 A549人肺癌细胞株和CCL229人大肠癌细胞株和均由中国医科大学生物教研室卫生部重点实验室提供。
2细胞培养
将细胞从冻存于液氮中的安瓶取出，放入37～40℃水浴中1min内融化，无菌条件下打开安瓶，接种于2只无菌培养瓶中。加入10%小牛血清PRMI1640培养液，在5%CO2，37℃条件下CO2培养箱中培养，倒置显微镜下动态观察细胞形态，24h后见细胞贴壁生长状态良好，弃培养液，分别加入各组血清，继续培养。
3标本制备
3.1细胞凋亡 生长在培养瓶内的贴壁细胞用2.5%戊二醛4℃原位固定2h,用橡皮铲刮下细胞，转至离心管内，低温高速离心机2000r/min,15min,琼脂处理成块，PBS冲洗，1%锷酸（OsO4）后固定1.5h,梯度乙醇、丙酮脱水，Epon812树脂包埋，超薄切片机（LKB-V）切片，醋酸铀和柠檬酸铅双重染色，透射电镜（JEM-1200）观察、摄片。
3.2酶细胞化学 取出培养皿中的载片，PBS冲洗，2%多聚甲醛固定30min,8%蔗糖脱水，3次×30min,分别加入Mg2+-ATP酶和G-6-P酶孵育液，37℃孵育45min,双蒸水冲洗，2min×3次，2%硫化铵成色，2min,双蒸水冲洗，2min×3次，梯度乙醇脱水各10min,甘油明胶封片，普通光镜下观察、拍片。
4 结果
4.1 细胞凋亡 ①正常对照组：各组肿瘤细胞株多为长梭形，表面可见较多的微绒毛，线粒体、粗面内质网、高尔基复合体、溶酶体等细胞器丰富、排列规则。②中药组：细胞表为椭圆形、圆形。表面微绒毛明显减少、消失。胞浆浓缩，可见大小不等的空泡，泡内容物电子密度与机制相似。细胞核变小、不规则，染色质浓缩、边集，呈断裂状，部分线粒体肿胀、空泡化。可见到典型的凋亡小体：圆形，可见从凋亡细胞脱落。位于凋亡细胞一侧，表面有完整的细胞膜包裹，小体内可见染色质碎片及破碎的内质网、囊泡化的线粒体等结构。③化疗组：结果与中药组相似，可见典型的凋亡小体。
4.2 酶细胞化学 ①Mg2+-ATP酶：光镜下可见对照组细胞Mg2+-ATP酶主要定位在细胞膜内侧，黑色酶反应颗粒大小均匀，密度大，呈线状规则排列，酶活性强。与正常组比较，中药组、西药组细胞的酶反应颗粒变小，数量减少，密度减低。提示酶活性明显下降。②G-6-P酶：光镜下可见对照组细胞的G-6-P酶主要定位在细胞质内，酶反应颗粒粗大，排列密集，呈融合状，酶活性强。与对照组比较，中药组、西药组细胞的酶反应颗粒变小，数量减少，密度减低，西药组部分细胞为阴性。提示酶活性明显下降。 采用Tiger图像分析仪测定Mg2+-ATP酶和G-6-P酶阳性细胞平均光密度（AOD）值，与对照组相比，P＜0.01.
5 讨论
中药血清药理学方法是由日本学者于20世纪80年代首先提出来的。是给动物灌服中药一定时间后，取其血清进行实验的药理学研究方法。利用血清药理学方法，给大鼠灌服中药一定时间后，取出血清进行体外实验。能客观反映中药进入体内之后，经过消化、吸收、代谢等过程后发挥药效作用，中药血清药理学提示：中药复方诱导的肿瘤细胞株凋亡具有可靠性和可信性[2]。
本研究证实，4种不同中药复方的中药血清，均能诱导相应肝癌细胞株、A549人肺癌细胞株、CCL-229人大肠癌细胞株和SGC-7901胃癌细胞株发生凋亡，见到典型的形态学特征性指标——凋亡小体[3-4]。
Mg2+-ATP酶是质膜标志酶，主要定位于细胞膜内侧，此酶参与质膜上离子的主动转运，维持细胞内K+和Na+浓度相对稳定状态，保持细胞膜内、外渗透压平衡以及参与保持细胞内外的化学梯度和跨膜电位，维持细胞内高钾低钠状态，从而保证细胞的活性。本实验中，药物血清作用后细胞的酶反应颗粒变小，数量减少，密度减低，提示酶活性明显下降。G-6-P酶是内质网标志酶，是一种多功能酶，是细胞内糖原异生作用中重要酶之一，被称为“代谢标志酶”之一。此酶在糖代谢、免疫球蛋白合成及其它蛋白质合成、浓缩、加工等方面发挥重要作用。本实验中，药物血清作用后细胞的酶反应颗粒变小，数量减少，密度减低，有的为阴性。提示酶活性明显下降[5-6]中药血清诱导肿瘤细胞凋亡，降低肿瘤细胞株酶活性可能是中药复方抗肿瘤的机理之一。笔者同样成功应用本中药血清药理学技术进行了胃癌宁对人SGC-7901胃癌细胞株p53、bcl-2基因表达影响的研究[7]。
（1）给药方案与采血时间。目前存在多种给药方案。但一般使用灌胃方式，也可通过皮肤、黏膜、呼吸道等途径给药。给药时间最短者为1天，最长者为10天；给药次数也各不相同，有每天2次的，也有每天3次的。尽管已有研究表明，连续用药5天和10天所制备的含药血清的生物学效应是相似的，但无论哪种给药方法都必须使药物浓度达到相对平衡状态。根据目前掌握的大量药物的有效成分的药代动力学数据，本实验采用与多数研究者一致的即时血清在实验前禁食12h,次日采用两次给药方式（一次给药后2h等量给药），连续灌胃3天，日两次；采血时相，分别在末次给药后1、2、3h采血。证明是研究中药复方作用肿瘤细胞株较为可靠的血清药理学方法血清[8-9]。（2）含药血清用量。目前中药含药血清的浓度还没有确切的规定，选用5 、10 和20浓度的含药血清进行实验所得结果的说法不一，进行细胞增殖抑制作用的实验采用高浓度的效果好，而进行细胞增殖促进作用的实验采用低浓度的效果好[10]，本研究采用10的平均浓度进行实验，结果较好。当然，最佳血清浓度是因不同实验而异的，故最好的做法是通过预实验来确定。血清药理学可较好地克服了中药粗制剂直接进入体外实验的缺点，其结果的可信度明显优于中药粗制剂直接用于体外实验，不仅提示中药制剂在胃肠内处理过程中活性成分的转化与改变，而且有利于中药真正有效活性部位、有效成分的发现，将有助于促进中药药理现代化的发展，为新药开发奠定能基础。本研究进一步证实，血清药理学方法在诱导肿瘤细胞凋亡、降低酶活性等研究中的应用具有稳定性、可信性。血清药理学方法的应用将更多的相关中药方剂引入抗肿瘤细胞凋亡及诱导细胞凋亡方面的研究，筛选有效的中药成分与其有效组方来达到诱导大量肿瘤细胞凋亡，揭示中药的抗癌机理，为中药治疗肿瘤提供科学、客观和现代的手段与方法，是今后研究的重要内容，对人类攻克肿瘤有着重大意义。
参考文献
[1] Iwama of shoszikoto,a Japanese and Chinese traditional herbal medical mixture on the mitogenic activity of lipopolysaccharide.A new pharmacology testing method[J].J Ethonopharmacal,1987,211:45.
[2] 米永杰、李健。中药血清药理学研究进展[J].四川解剖学杂志，2006，14（4）：34-35.
[3] 蔡朔，刘芙蓉，邵亚群．胃癌宁诱导人SGC-7901胃癌细胞调亡的实验研究[J].中华现代中西医杂志，2006，4（3）：206.
[4]刘春英， 王哲， 蔡朔，等．肺癌平诱导Lewis肺癌小鼠肿瘤细胞凋亡的形态学研究 [J].中国实验方剂学杂志，2005，11（2）：132-134.
[5] 刘春英， 王哲， 蔡朔，等． 肺癌平药物血清对A549人肺癌细胞株Mg2＋-ATP、G-6-P酶活性的影响[J].2004，11（11）：969-971.
[6] 金春峰，刘春英， 蔡朔，等． 益肺饮对A549人肺癌细胞株酶活性的实验研究[J].中国肿瘤，2004，13（9）：588-590.
[7] 蔡朔，刘芙蓉，刘山．胃癌宁诱导人SGC-7901胃癌细胞株p53、bcl-2基因表达影响研究[J].中华中西医临床杂志，2007，7（2）：9-12.
[8] 刘成海，刘平，刘成，等． 抗肝纤维化有效中药复方血清药理学方法探讨[J].中国实验方剂学杂志，1998，4(2)：16-17.
[9] 王宁生，雷燕，刘平，等． 关于血清药理学的思考[J]. 中国中西医结合杂志，1999，9(5)：263-165.
[10]崔玲，晏卫东．中药血清药理研究方法回顾与展望[J].武警医学，2004，15(6)：460-461.
中华中医药学刊 2008年5期 作者：蔡朔 刘山 张丽红 金春峰 刘春英
中国论文网(www.lunwen.net.cn)免费学术期刊论文发表,目录,论文查重入口,本科毕业论文怎么写,职称论文范文,论文摘要,论文文献资料,毕业论文格式,论文检测降重服务。
