【关键词】 Biglycan; 地塞米松; 血管平滑肌细胞; 钙化
Effect of Biglycan on Calcification of Vascular Smooth Muscle Cells Induced by Dexamethasone
LU Li-he1, LIU Lan2, TAN Hong-mei1, ZHANG Xuan-hong1
(1. Department of Pathophysiology, Zhongshan School of Medicine, SUN Yat-sen University, Guangzhou 510080, China;
2. Department of Pathology, Yunnan Medical College, Kunming 650031, China)
Abstract: 【Objective】 To investigate the molecular mechanism of vascular smooth muscle cells (VSMCs) calcification induced by dexamethasone (Dex). 【Methods】 VSMCs were induced by Dex to detect the expression of biglycan (BGN). Through 10-8 mol/L Dex induction, BGN recombined VSMCs infected by adenovirus/BGN (Ad/BGN) or empty adenovirus (Ad/Bgl) to detect the calcification rate of VSMCs, the expression of BGN, osteocalcin, cbfa1, and bone morphogenetic protein 4 (BMP4) respectively. Cells were divided into four groups (n = 3): Ad/Bgl-BGP group: VSMCs were infected with Ad/Bgl; Ad/BGN-BGP group: VSMCs were infected with Ad/BGN; Ad/Bgl-Dex group: VSMCs were infected with Ad/Bgl induced by Dex; Ad/BGN-Dex group: VSMCs were infected with Ad/BGN induced by Dex. 【Results】 After transfected by Ad/BGN, the calcification of VSMCs enhanced, and the protein expression of osteocalcin, cbfa1, and BMP4 increased significantly compared with those in cells infected with Ad/Bgl. The protein expression of osteocalcin, cbfa1, and BMP4 in VSMCs infected with Ad/BGN induced by Dex increased even more. 【Conclusion】 BGN can accelerate the calcification of VSMCs induced by dexamethasone.
Key words: biglycan; dexamethasone; vascular smooth muscle cells; calcification
血管钙化过程是一个与骨形成过程相似的可调控的生物学过程,其中血管平滑肌细胞(vascular smooth muscle cells, VSMCs)是参与血管钙化的主要细胞。当血管平滑肌细胞受到促钙化因素的刺激如糖皮质激素水平升高,氧化应激,钙磷代谢紊乱等等,血管平滑肌细胞分化为具有成骨细胞特征样的细胞,分泌大量的骨相关蛋白(bone-related proteins)。目前已证实地塞米松(dexamethasone, Dex)能呈时间和剂量依赖性地促进血管钙化,并上调核心结合因子α1(cbfa1)的表达[1]。然而,促使VSMCs向成骨细胞样分化的分子基础尚不清楚。研究表明,一种富含亮氨酸的双链蛋白聚糖(biglycan,BGN)参与骨形成,促进成骨前体细胞向成骨细胞分化[2]。本实验旨在通过观察BGN在VSMCs对地塞米松诱导的钙化过程中的作用,从BGN途径初步探讨地塞米松导致的VSMCs钙化的分子机制。
1 材料与方法
1.1 实验材料
DMEM培养液(Sigma, USA),100 mL/L胎牛血清(Sigma, USA),Biglycan ( Sigma, USA),Ad/BGN(曼彻斯特大学心血管病实验室惠赠)。
1.2 建立VSMCs钙化体外模型
取截肢病人的动脉,无菌操作切成小块,于含10% FBS 的DMEM中,37 ℃,体积分数5%CO2培养,每周换液3次。用细胞免疫荧光的方法鉴定VSMCs:α-SM-actin 作为VSMCs的分子标志物,vWF为血管内皮细胞的标志物,确保所得的细胞为VSMCs,排除血管内皮细胞的污染。以β-甘油磷酸(beta-glycerophosphate,BGP)加地塞米松(Dex)诱导其钙化。实验分3组:control:正常对照组,培养液为DMEM。BGP组:培养液为DMEM + 10 mmol/L BGP。BGP+Dex组:培养液为DMEM + 10 mmol/L BGP + 10-8 mol/L Dex。以Western blot方法检测BGN的表达。
1.3 Ad/BGN感染VSMCs
将VSMCs接种到六孔板,待其长到80%confluence时用不同浓度的表达报告基因的Ad/Laz(携带LacZ基因的重组腺病毒)(MOI = 0, 10, 50, 100, 150, 300)感染细胞,再用X-gal染色以确定最佳浓度供以后的Ad/BGN转染实验使用。最佳的浓度应该是染色的细胞比例达100%,同时没有细胞损伤。选择3-8代的VSMCs,分4组:Ad/Bgl-BGP组:培养液为DMEM + 10 mmol/L BGP,用空载体Ad/Bgl感染细胞。Ad/BGN-BGP组:培养液为DMEM + 10 mmol/L BGP,用含目的基因的载体Ad/BGN感染细胞。Ad/Bgl-Dex组:培养液为DMEM + 10 mmol/L BGP + 10-8 mol/L Dex。用空载体Ad/Bgl感染细胞。Ad/BGN-Dex组:培养液为DMEM + 10 mmol/L BGP + 10-8 mol/L Dex。用含目的基因的载体Ad/BGN感染细胞。在腺病毒感染细胞后第14天观察以下指标。
1.4 Ad/BGN转染对VSMCs钙化的影响
平滑肌细胞去除培养液,PBS洗3次后以40 g/L甲醛室温下固定10 min,PBS洗后加茜素红(pH4.2)染色5 min,去离子水洗3次,相差显微镜观察钙沉积。
1.5 Western-blot测定BGN、骨钙数、cbfa1和BMP4蛋白的水平
收集细胞,PBS洗3次,加超声裂解缓冲液(50 mmol/L NaH2PO4, 100 mmol/L Tris-HCl, 250 mmol/L NaCl, 100 mg/L, PMSF1 mg/L, Aprotitin, pH 8.0),200 ~ 300 W超声裂解10次,每次10 s,间隔10 s。12 000 r/min(r = 10 cm) 4 ℃离心40 min,上清即为总蛋白粗提液。 用Bio-rad标准曲线定量蛋白,总蛋白40 μg加等体积2 × 上样缓冲夜混匀后煮沸变性5 min,120 g/L十二烷基磺酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳分离蛋白,半干法转至醋酸纤维膜; 室温下脱脂奶粉封闭2 h后加封闭液和BGN、骨钙素(Osteocalcin)、cbfa1、骨形态生成蛋白4(bone morphogenic proteins 4, BMP4)以及β-actin的一抗、二抗于室温下共同孵育1 h。将滤膜转移到Tris-Cl 中温育10 min,辣根过氧化物酶显色,拍照。
1.6 统计学处理
每次实验重复3次。采用SPSS系统软件中的One-way ANOVA检验分析并处理相关数据。P < 0.05被认为差异有统计学意义。
2 结 果
2.1 地塞米松对血管平滑肌细胞的BGN表达的影响
较之培养液不含BGP和Dex的正常对照组和不含Dex的BGP组,地塞米松诱导组(BGP + Dex)VSMCs的BGN表达明显增加(图1)。
2.2 Ad/BGN感染血管平滑肌细胞的浓度
不同浓度的Ad/LacZ感染血管平滑肌细胞后,LacZ(β-半乳糖苷酶基因)的表达呈剂量依赖性增加(图2)。
2.3 BGN对血管平滑肌细胞钙化的影响
Ad/BGN转染后,对于单纯BGP诱导的VSMCs(图3A、B),可见其Ad/BGN后钙化程度有所加强;对于地塞米松加BGP诱导的VSMCs(图3C、D),同样可观察到Ad/BGN转染较之空载体Ad/Bgl感染的细胞钙化增加。
2.4 BGN对血管平滑肌细胞中osteocalcin、cbfa1、BMP4蛋白水平的影响
Ad/BGN转染后(图4B、D),VSMCs的osteocalcin、cbfa1 和BMP4蛋白水平较之相应对照组表达明显增多(图4A、C)。加地塞米松诱导后,Ad/BGN转染的VSMCs(图4D),其BGN蛋白的表达量较未加地塞米松的相应对照组(图4B)有显著增加。
3 讨 论
BGN是一种富含亮氨酸的小分子蛋白聚糖(small leucine-rich proteoglycans, SLRPs)家族成员,属于细胞外基质蛋白(extracellular matrix protein)。BGN主要在结缔组织中表达,在骨和软骨细胞的表面和细胞外基质中高表达[3]。本研究证实了BGN在地塞米松诱导的VSMCs钙化中表达增加,且重组BGN腺病毒载体转染平滑肌细胞内可促进地塞米松诱导的钙化作用。
3.1 血管平滑肌细胞及糖皮质激素在血管钙化中的可能作用
VSMCs在不同的条件下存在不同的表型,包括收缩型,分泌型以及成骨细胞样型[4]。VSMCs具有很强的可塑性,细胞外周环境的变化可促使其表型的转变[5]。当血管平滑肌细胞受到促钙化因素的刺激如糖皮质激素水平升高,氧化应激,钙磷代谢紊乱等,VSMCs分化为具有成骨细胞特征样的细胞,分泌大量的骨相关蛋白,如cbfa1,BMP,Osteocalcin等[6]。VSMCs又是参与血管钙化的主要细胞。因此,血管钙化过程很可能就是VSMCs由收缩型向成骨细胞样型分化(osteoblastic differentiation)的过程。
糖皮质激素是肾上腺皮质合成的类固醇激素。体内和体外实验提示糖皮质激素是血管钙化的诱导因子。尽管糖皮质激素能诱导骨质疏松,但是它同样能促进血管钙化。体外实验证实糖皮质激素能诱导糖皮质激素能诱导骨髓基质细胞,成纤维细胞,以及血管平滑肌细胞向成骨细胞方向分化,调节骨相关蛋白的表达[2,7]。以上研究结果表明糖皮质激素是强力的血管钙化诱导因子,但其促使血管钙化的机制并不完全清楚。
3.2 BGN参与地塞米松诱导血管平滑肌细胞钙化的作用机制探讨
研究表明,BGN参与骨形成,促进成骨前体细胞向成骨细胞分化[2]。小鼠BGN基因敲除实验表明,缺乏BGN的表达会导致骨质疏松,骨形成受影响[2]。由于血管钙化过程与骨形成过程很相似,提示BGN有可能与血管钙化密切相关。此外,近来研究发现Decorin能促进VSMCs钙化,并且在动脉粥样斑块钙化区有高表达[8]。而BGN的结构和功能与Decorin十分相似。此外,Moreno等[9]的动物实验结果表明,在蟾蜍胚胎中BGN可与BMP4结合并调节其生物学活性。因此我们有理由相信BGN很有可能也参与血管钙化,其机制可能与BGN调节骨形态生成蛋白(bone morphogenic proteins, BMPs)的活性有关。已有实验证明,BGN可通过调节BMPs信号途径诱导骨细胞向成骨细胞分化,并导致细胞外基质钙化[10]。另外,有研究报道地塞米松可诱导人肾系膜细胞中BGN表达增加[10]。结合上述我们的研究成果,我们推测地塞米松诱导的VSMCs钙化的机制可能是:地塞米松能上调BGN的表达,BGN通过激活BMP4通路,导致VSMCs向成骨样细胞分化,最终形成钙化。
【参考文献】
[1]Trion A, Schutte-Bart C, Bax WH, et al. Modulation of calcification of vascular smooth muscle cells in culture by calcium antagonists, statins, and their combination [J]. Mol Cell Biochem, 2008,308(1-2):25-33.
[2]Xu T, Bianco P, Fisher LW, et al. Targeted disruption of the biglycan gene leads to an osteoporosis-like phenotype in mice [J]. Nat Genet, 1998,20 (1):78-82.
[3]Bereczki E, Sántha M. The role of biglycan in the heart [J]. Connect Tissue Res, 2008,49(3):129-132.
[4]Bochaton-Piallat ML, Ropraz P, Gabbiani F, et al. Phenotypic heterogeneity of rat arterial smooth muscle cell clones: implications for the development of experimental intimal thickening [J]. Arterioscler Thromb Vasc Biol, 1996,16(6):815-820.
[5]聂如琼,王景峰,滕 虹,等. 曲尼司特对动脉损伤后血管外膜重塑及细胞增殖的作用 [J]. 中山大学学报:医学科学版, 2008,29(1):20-24.
[6]Steitz SA, Speer MY, Curinga G, et al. Smooth muscle cell phenotypic transition associated with calcification: upregulation of Cbfa1 and downregulation of smooth muscle lineage markers [J]. Circ Res, 2001,89(12):1147-1154.
[7]Cheng SL, Yang JW, Rifas L, et al. Differentiation of human bone marrow osteogenic stromal cells in vitro: induction of the osteoblast phenotype by dexamethasone [J]. Endocrinology, 1994,134(1):277-286.
[8]Fischer JW, Steitz SA, Johnson PY, et al. Decorin promotes aortic smooth muscle cell calcification and colocalizes to calcified regions in human atherosclerotic lesions [J]. Arterioscler Thromb Vasc Biol, 2004,24(12):2391-2396.
[9]Moreno M, Mu?觡oz R, Aroca F, et al. Biglycan is a new extracellular component of the Chordin-BMP4 signaling pathway [J]. EMBO J, 2005,24(7):1397-1405.
[10]Chen XD, Fisher LW, Robey PG, et al. The small leucine-rich proteoglycan biglycan modulates BMP-4-induced osteoblast differentiation [J]. FASEB J, 2004,18(9):948-958.
[11]Kuroda M, Sasamura H, Shimizu-Hirota R, et al. Glucocorticoid regulation of proteoglycan synthesis in mesangial cells [J]. Kidney Int, 2002,62(3):780-789.
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